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簡要描述:小鼠癲癇動物模型實(shí)驗(yàn)小鼠癲癇動物模型是研究癲癇發(fā)病機(jī)制、評估抗癲癇藥物效果以及探索新的治療策略的重要工具。
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小鼠癲癇動物模型實(shí)驗(yàn)
小鼠癲癇動物模型是研究癲癇發(fā)病機(jī)制、評估抗癲癇藥物效果以及探索新的治療策略的重要工具。
以下是一些常用的小鼠癲癇動物模型實(shí)驗(yàn)方法:
1.化學(xué)誘導(dǎo)模型:
1.1紅藻氨酸(KA)模型:通過立體定向注射KA到小鼠的海馬或其他腦區(qū)來誘導(dǎo)癲癇發(fā)作。這種模型可以模擬顳葉癲癇的病理過程,尤其是海馬區(qū)域的神經(jīng)元損傷和細(xì)胞死亡。
1.2鋰-匹羅卡品(Li-Pilo)模型:先給予小鼠鋰鹽,然后注射匹羅卡品來誘導(dǎo)癲癇持續(xù)狀態(tài)(status epilepticus, SE),此模型可以發(fā)展為慢性自發(fā)性癲癇模型,適用于研究癲癇的慢性階段。
2.電刺激模型:
最大電休克(MES)模型:通過給予小鼠一次高強(qiáng)度的電流刺激來誘發(fā)強(qiáng)直陣攣發(fā)作,這個模型常用于篩選抗癲癇藥物。
3.基因工程模型:
利用基因編輯技術(shù)(如CRISPR-Cas9)敲除或過表達(dá)特定基因,創(chuàng)建與人類癲癇相關(guān)的遺傳模型。
在建模過程中,研究者需要仔細(xì)選擇合適的小鼠品系、藥物劑量、注射方式和監(jiān)測方法,以確保模型的可靠性和重現(xiàn)性。此外,應(yīng)嚴(yán)格遵守動物福利和倫理規(guī)定,
減少動物的不適和痛苦。
根據(jù)最新的研究進(jìn)展,梨狀皮層注射KA建立的癲癇小鼠模型為癲癇發(fā)病機(jī)制的研究提供了新的動物模型,這種模型在急性期就能成功激發(fā)癲癇,且與海馬注射KA的
癲癇模型相比,癲癇發(fā)作評分沒有顯著性差異。這些信息對于構(gòu)建和優(yōu)化小鼠癲癇模型具有重要的指導(dǎo)意義。
例如:
1)腹腔注射氯化鋰(127mg/kg),用以易化匹羅卡品的致癇作用;
2)18.5~23.5h后腹腔注射溴化甲基東莨菪堿(1mg/kg),用以減輕致癇劑匹羅卡品的外周*堿能副反應(yīng);
3)30min后腹腔注射匹羅卡品(60mg/kg);
4)注射匹羅卡品后對大鼠的行為學(xué)表現(xiàn)進(jìn)行觀察,并根據(jù)Racine標(biāo)準(zhǔn)對每只大鼠的發(fā)作程度進(jìn)行評定,癲癇持續(xù)狀態(tài)(SE)規(guī)定為連續(xù)的全身性發(fā)作(4或5級發(fā)作,4級主要表現(xiàn)為直立,5級主要表現(xiàn)為直立并摔倒,均同時(shí)伴有全身陣攣性發(fā)作)或多個4或5級發(fā)作,并且行為學(xué)在90min發(fā)作間期內(nèi)未恢復(fù)正常者。記錄發(fā)作的時(shí)間潛伏期(從給藥到SE開始的時(shí)間)。如給藥30min后無SE發(fā)作,重復(fù)給藥一次。
5)SE 90min后,腹腔注射**泮(4mg/kg)終止發(fā)作,以避免癇性發(fā)作致死。發(fā)作程度<4級的大鼠剔除。飼養(yǎng)1周后觀察,無自發(fā)性癲癇發(fā)作的大鼠剔除。給予抗癲癇藥物*妥英鈉(PHT)75mg/kg腹腔注射一次,觀察一周,仍出現(xiàn)癲癇發(fā)作的大鼠給予PHT 75 mg/kg腹腔注射一次,觀察一周,仍出現(xiàn)癲癇發(fā)作的為成功模型。
耐藥相關(guān)指標(biāo)研究 海馬組織,突觸前SV2A蛋白、突觸后PSD-95蛋白、GluR2、miR-485
參考
[1]張玲芝, 秦瀅, 吳連連, 等. 梨狀皮層注射紅藻氨酸建立癲癇小鼠模型[J]. 南京醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版), 2023,43(8):1094-1101.
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